Смекни!
smekni.com

Состояние естественной резистентности и иммунологической реактивности у новорожденных телят при колибактериозе (стр. 30 из 33)

Совместное введение обоих препаратов обеспечивает высокую эффективность лечения, предотвращающего рецидивы заболевания. При этом повышается неспецифическая резистентность организма, способствующая скорейшему ингибированию возбудителя болезни. Кроме того, исключение использования антибиотиков способствует сохранению эубиоза предотвращает развитие аллергии у людей.

Способ осуществлялся следующим образом. Вводят подкожно 0,01 % раствор Т-активина в дозе 0,8-1,0 мл ежедневно в течение 2-3 суток, а аминазин вводят внутримышечно в форме 2,5 %-ного раствора в дозе 0,6-0,8 мл на 1 кг живой массы 1 раз в сутки в течение 2-3 суток.

Пример осуществления способа. На молочной ферме учхоза «Кетросу» с поголовьем 220 голов заболели колибактериозом 62 новорожденных теленка. Для лечения заболевания животных был использован предлагаемый способ, в соответствии с которым вводили больным телятам аминазин 2,5 %-ной концентрации на 0,5-ном растворе новокаина внутримышечно в дозе 0,6-0,8 мл на 1 кг живой массы 1 раз в сутки в течение 3 суток. Одновременно с этим подкожно вводили 0,01 %-ный. раствор Т-активина в дозе 0,8-1,0 мл 1 раз в сутки в течение 3 суток. В результате проведенного лечения выздоровело 58 телят. Для определения оптимальных параметров способа был поставлен ряд опытов, результаты которых сведены в табл. 4.6-4.10.

Таблица 4.6

Определение разовой дозы аминазина
Группа Количество голов Доза в мл Продолжительность курса Выздоровело, %
1 15 0,4 1 0
2 15 0,5 1 0
3 15 0,6 1 20
4 15 0,7 1 40
5 15 0,8 1 40
6 15 0,9 1 40

Как следует из таблицы, введение аминазина в дозе менее 0,6 мл неэффективно или малоэффективно при повышении дозы более 0,8 мл дальнейшего увеличения эффективности лечения не происходит. Таким образом, оптимальной является разовая доза внутримышечного введения 2,5 %-ного раствора аминазина в пределах 0,6-0,8 мл на 1 кг живой массы.

Таблица 4.7

Определение кратности введения Т-активина.
Группа Количество голов Доза аминазина Кратность введения аминазина Доза Т-активина Кратность введения Т-активина Выздоровело, %
1 15 0,6 3 1,0 1 80
2 15 0,6 3 1,0 2 93,4
3 15 0,6 3 1,0 3 93,4
4 15 0,6 3 1,0 4 93,4

Как следует из табл. 4.7, Т-активин целесообразно вводить 1 раз в сутки в течение 2-3 суток. Однократное его введение не обеспечивает достаточно высокой эффективности лечения. При продолжении введения Т-активина более 3-х суток дальнейшего роста эффективности леченая не происходит.

Таблица 4.8

Определение кратности введения аминазина
Группа Количество голов Доза в мл Продолжительность курса лечения (сутки) Выздоровело, %
1 15 0,6 1 0
2 15 0,6 2 0
3 15 0,6 3 20
4 15 0,6 4 40

Таким образом, при введении аминазина менее 2-х раз не достигается высокая эффективность лечения. Оптимальным является введение аминазина в течение 2-3 суток. Дальнейшее введение аминазина не приводит к росту эффективности лечения.

Таблица 4.9

Определение оптимальной дозы Т-активина в комплексе с аминазином
Группа Количество голов Доза аминазина Кратность введения Доза в мл Выздоровело %
1 15 0,6 3 0,7 60
2 15 0,6 3 0,8 80
3 15 0,6 3 0,9 80
4 15 0,6 3 1,0 80
5 15 0,6 3 1,1 80

Оптимальной является доза Т-активина в количестве 0,8-1,0 мл на одно введение. Меньшее количество препарата не обеспечивало достаточно высокой эффективности лечения, а повышение дозы не приводит к увеличению процента выздоровления заболевших животных.

Таблица 4.10

Сравнительная терапевтическая эффективность препаратов
Способ лечения Количество голов Доза препарата Кратность введения Выздоровело %

1. Предлагаемый комплекс состоит из:

а) аминазина;

б) Т-активина.

15

0,6-0,8 мл

0,8-1 мл

1 раз в сутки в течение 2-3 суток 93,4
2. Антибиотик (неомицин) 15 5000 ЕД на 1 кг живой массы 2 раза в сутки в течение 2-3 суток 40,0
3. Прототип (хлопромазин, син. аминазина) 15 0,6 мл Однократное введение 33,3

Таким образом, как следует из проведенных исследований, оптимальная терапевтическая эффективность лечения колибактериоза, достигается при внутримышечном введении аминазина в дозе 0,6-0,8 мл на 1 кг живой массы 1 раз в сутки и Т-активина в дозе 0,8-1,0 мл подкожно 1 раз в сутки в течение 2-3 суток. Такое осуществление способа лечения колибактериоза у телят обеспечивает достижение терапевтической эффективности порядка 93,4 %.

ВЫВОДЫ

· Для коррекции иммунодефицита (уровень иммуноглобулинов меньше 20 мг/мл по цинк-сульфатному тесту) новорожденным телятам вводить внутривенно по 50 мл лактоглобулина или по 100 мл колостральной сыворотки.

· Оптимальная терапевтическая эффективность лечения колибактериоза достигается при внутримышечном введении телятам ретинола в дозе 100000-150000 ME 1 раз в сутки в течение 2 - 3 суток в сочетании с внутривенным введением лактоглобулина в дозе 75-80 мл 1 раз в сутки в течение 1 - 2 суток.

· Внутримышечное введение хлорпромазина в дозе 0,6-0,8 мл на 1 кг живой массы 1 раз в сутки и Т-активина в дозе 0,8-1,0 мл подкожно 1 раз в сутки в течение 2 - 3 суток обеспечивает достижение терапевтической эффективности порядка 93,4%.

5. Обсуждение результатов исследований.

Выполненная работа посвящена исследованию состоянию естественной резистентности и иммунологической реактивности у новорожденных телят при колибактериозе.

Постановка данного вопроса вызвана тем, что эта инфекция еще до сих пор сравнительно широко распространена в хозяйствах республики и наносит большой экономический ущерб, вследствие гибели телят, затрат труда и средств на лечение больных, а также за счет вынужденного выращивания слабого, недоразвитого после переболевания молодняка. Все это отрицательно сказывается на воспроизводствe стада, как одного из важнейших факторов роста поголовья и повышения продуктивности животных.

В комплексе задач по профилактике и лечению колибактериоза важное место занимает специфическая и неспецифическая иммунологическая реактивность, и ее коррекция посредством различных иммуномодуляторов и антисекреторных факторов.

Учитывая, что молозиво является единственным источником иммуноглобулинов, а, следовательно, и иммунологической защиты, т.е. специфической резистентности, необходимо создавать такие условия содержания и кормления стельных коров, чтобы добиться увеличения выхода молозива с высоким уровнем иммуноглобулинов и широкой противомикробной специфичностью. Основная часть иммуноглобулинов поступает в секрет молочной железы из крови в неизменном состоянии, аккумулируясь в молозиве за 3-9 дней до отела. Основным иммуноглобулином молозива коров является IgG. Иммуноглобулины классов М и А частично синтезируются плазматическими клетками молочной железы. По данным E. W. Fisher, A. A. Martinez, Z. Traianin, 1975; В. М. Чекишев, В. М. Васильев, А. И. Кабанцев, 1983; H. Balbierz, M. Nicolaijczuk, J. Zeilinski, 1983; Н. В. Матузенко, Е. В. Андреев, А. И. Собко, 1990; Д. Н. Масюк, 1997, уровень IgG в молозиве первого удоя составляет 73,4-122,2 мг/мл, IgM и IgA – соответственно 6,0 и 8,0 мг/мл.

По нашим данным, содержание иммуноглобулинов различных классов значительно варьирует, особенно заметно превалирует концентрация IgG в секрете молочной железы и в сыворотке крови по сравнению с IgМ и IgА. Количественное содержание IgG в молозиве составляло 49,5±0,21 мг/мл, тогда как концентрация IgМ и IgА равнялась соответственно 4,16±0,16 мг/мл и 3,93±0,28 мг/мл.

Содержание IgG в сыворотке крови равнялось 18,29±0,27 мг/мл, в то время как концентрация IgМ и IgА составляла соответственно 2,54±0,07 мг/мл и 0,49±0,02 мг/мл.

При изучении количественного содержания иммунных глобулинов в сыворотке молока установили значительное превышение IgG (0,59±0,03 мг/мл) в сопоставлении с уровнем IgМ (0,05±0,01 мг/мл) и IgА (0,13±0,01 мг/мл).

Процентное отношение содержания иммунных глобулинов в сыворотке крови и секрете молочной железы коров к общему уровню иммуноглобулинов составило соответственно в сыворотке крови IgG — 85,78 %; IgМ — 11,92 и IgА — 2,3 %. В сыворотке молозива эти показатели равнялись: IgG — 85,96 %; IgМ — 7,25 и IgА — 6,82 %.

Процентное отношение содержания иммунных глобулинов в сыворотке молока к общему уровню составило: IgG 76,62; IgМ — 6,50 и IgА — 16,88.

Установлено [Ю. Н. Федоров, 1996], что однократная дача молозива с содержанием 80 мг/мл телятям через 6, 12, 36 и 48 ч после рождения дает средние показатели иммуноглобулинов в сыворотке телят соответственно 66; 47; 12; 7 и 6 % от 100 % рассчитанного предложенного количества иммуноглобулинов.

Следовательно, чем раньше новорожденный теленок получит первое молозиво, тем более высокий уровень иммуноглобулинов поступает в кровоток.

Иммунологический статус, а, следовательно, своевременность и адекватность получения молозива у новорожденных телят контролировали в условиях хозяйства. С этой целью использовали цинк-сульфатный и натрий сульфитный тесты. Наиболее простым и информативным был пробирочный тест с сульфатом натрия. Данный метод давал возможность определять своевременность получения телятами молозива после рождения, принимать меры направленные на повышение иммунологического статуса. Это достигалось как дополнительной дачей молозива так и пероральным введением колостральной сыворотки и лактоглобулина, согласно методическим указаниям, утвержденным НТС МСХ и продовольствия Республики Молдова, Кишинев, 1994.