Смекни!
smekni.com

Гигиенические критерии оценки и классификация условий труда (стр. 23 из 31)

Логарифмически вероятностная координатная сетка

2. Для определения среднесменной концентрации расчетным методом заполняем таблицу П.9.1 в соответствии с требованиями раздела 4 прилож. 9 настоящего руководства.

Рассчитываем средние концентрации для каждой операции 01 – К04):

К1, К2 ... Кn концентрации вещества;

t1, t2tn– время отбора пробы.

По результатам определения средних концентрацийза операцию 0) и длительности операции (Т0) рассчитывают среднесменную концентрацию СС) как средневзвешенную величину за смену:

К01, К02 ... К0n – средняя концентрация за операцию;

Т01, Т02Т0n продолжительность операции.

Определяем статистические показатели, характеризующие процесс загрязнения воздуха рабочей зоны в течение смены: минимальную концентрацию за смену (КМИН), максимальная концентрация за смену (КМАКС); медиану (Me); стандартное геометрическое отклонение sg.

К1, К2 ... Кn концентрации вещества в отобранной пробе;

t1, t2tn– время отбора пробы.

КСС– среднесменная концентрация;

Me медиана.


Таблица П.9.1

Определение среднесменной концентрации расчетным методом

Ф. И. О.

Профессия

Предприятие

Цех, производство

Наименование вещества

Наименование и краткое описание этапа производственного процесса (операции) Длительностьоперации (этапа производственногопроцесса),Т, мин Длительность отбора разовой пробы, t, мин Концентрация вещества в пробе, К, мг/м3 Произведение концентрации на время, К t Средняяконцентрация за операцию, Ко, мг/м3 Статистические показатели, характеризующие процесспылевыделения за смену
Этап 1 70 10 40,5 405,0 91,9 Среднесменная концентрацияКСС = 27,9 мг/м3
7 59,5 416,5
5 173,3 866,5
10 110,6 1106,0
5 121,1 605,5
Этап 2 193 21 18,8 394,8 20,2 Минимальная концентрация в течениесмены КМИН = 4,0 мг/м3
38 17,8 676,4
13 29,9 388,7
15 20,0 300,0
Этап 3 150 10 39,4 394,0 21,5 Максимальная концентрация в течение смены КМАКС = 173,3 мг/м3.Медиана Ме = 18,4
30 14,2 426,0
11 23,7 260,7
10 23,3 233,0
Этап 4 67 15 21,5 322,5 9,5 Стандартное геометрическое отклонение sg = 2,6
16 11,8 188,8
40 4,0 160,0

Приложение 10 (Обязательное)

Методика контроля содержания микроорганизмов в воздухе рабочей зоны

1. Общие положения

1.1. Методика определяет требования к измерению в воздухе рабочей зоны концентраций микроорганизмов, живых клеток и спор, находящихся в составе товарных форм препаратов на предприятиях по производству препаратов методом биосинтеза, а также помещений общественных и промышленных зданий.

1.2. К использованию в технологических процессах допускаются штаммы микроорганизмов, разрешенные департаментом госсанэпиднадзора Минздрава России.

1.3. Контроль воздуха на содержание вредных веществ биологической природы – продуктов микробного синтеза (ферменты, витамины, антибиотики и др.) проводится так, как это принято для химических веществ.

2. Требования к отбору проб

2.1. Отбор проб воздуха для контроля содержания микроорганизмов проводится путем аспирации их из воздуха на поверхность плотной питательной среды.

2.2. Отбору проб должна предшествовать краткая характеристика микроорганизмов: указывается семейство, род, вид, штамм, морфологическая характеристика колоний на твердой питательной среде и оптимальные условия роста колоний на твердой питательной среде (РН, Т°).

2.3. Отбор проб воздуха проводят:

– при засеве инокуляторов в зоне дыхания и между инокуляторами;

– при отборе проб из инокуляторов;

– при засеве посевных аппаратов (при условии прямого засеивания);

– при отборе проб из посевных аппаратов у пробника и между посевными аппаратами;

– при отборе проб из ферментеров;

– при спуске культуральной жидкости из ферментеров в коагуляторы или прямо на фильтрацию.

Если в технологическом процессе имеет место сушка биомассы, то отбор проб проводится:

– при перемешивании;

– при выгрузке из сушильных аппаратов;

– при фасовке биомассы.

Перечисленные точки отбора ориентировочные и на каждом предприятии устанавливаются индивидуально с учетом данных валидации, характеристик процесса, методологии тестирования и т. п.

2.4. При текущем контроле в одном помещении число контрольных точек должно быть не менее трех

2.5. Для сравнительного анализа концентраций микроорганизмов в воздухе рабочей зоны отбор проб должен проводиться не реже 1 раза в неделю в аналогичный по интенсивности технологического процесса временной период

2.6. Объем пробы воздуха должен быть достаточным для обнаружения микроорганизмов Он устанавливается опытным путем с учетом характеристик используемого пробоотборника и концентрации микроорганизмов в тестируемой зоне

Примечание.Для импакторов и центрифужных пробоотборников одним из ограничивающих факторов является высыхание поверхности агара при больших объемах проб, а также возможность повреждения поверхности агарового слоя (растрескивание)

2.7 Отбор проб на содержание микроорганизмов проводят в рабочей зоне, высота установки прибора 1,5 м от уровня пола.

3. Характеристика метода

3.1. Метод основан на аспирации микроорганизмов из воздуха на поверхность плотных элективных питательных сред (специфичных для данного микроорганизма) и подсчета выросших колоний по типичным морфологическим признакам.

3.2. В специфическую питательную среду добавляют вещества (этиловый спирт, нефтепродукты, антибиотики и т. п.) для подавления посторонней микрофлоры, в зависимости от особенностей изучаемого штамма.

3.3. Отбор проб проводится с концентрированном воздуха на чашке Петри с посевной средой.

Примечание.

1. Выбор питательной среды является важным фактором Базовой средой для бактерий является среда № 1 (по ГФ, изд. XI, вып. 2., с 200*) и среда № 2 (агар Сабуро) для дрожжей и грибов. Посевы на среде № I инкубируются при температуре от 30 до 35 °С в течение 48 ч, на агаре Сабуро – от 20 до 25 °С в течение 72 ч.

2. Перед исследованием разлитые на чашки Петри или на пластины питательные среды необходимо выдержать в термостате при температуре от 30 до 35 °С в течение 24 ч для подтверждения их стерильности. Проросшие чашки бракуют.

3. Ростовые свойства питательных сред должны быть проверены соответствующими тест-штаммами (для среды № I и среды № 2 по ГФ, изд. XI, вып 2, с. 208 «Требования к ростовым свойствам питательных сред»).

3.4 Предел измерения от 0,5 до до 2–106 КОЕ/м3.

3 5. Выявленные в процессе отбора пробы воздуха микроорганизмы подлежат обязательной макроскопической (форма, цвет, консистенция колоний) и микроскопической идентификации окрашенных по Грамму мазков Результаты исследований должны регистрироваться в документах, где указывают основные морфологические признаки: отношение к окраске по Грамму, наличие или отсутствие спорообразования, форма микроорганизмов (кокки, палочки, овоиды и т.п.).

В процессе идентификации микроорганизмов могут быть использованы биохимические тест-системы, идентификационные автоматизированные системы, а также любые современные методы идентификации микроорганизмов

4. Приборы и посуда

4 1. Для бактериологического анализа воздуха используют импактор воздуха микробиологический «Флора-100» (ТУ 64–098– 33–95)

Примечание.Современная отечественная модель – высокопроизводительный импактор «Флора 100» работает в автоматическом режиме, отбирает заданный объем воздуха и осаждает биологический аэрозоль на чашку Петри с плотной питательной средой. Импактор полностью заменяет широко используемый для контроля прибор Кротова и превосходит его по всем техническим характеристикам (точность определения, масса, габариты, скорость пробоотбора, автоматический контроль параметров пробоотбора и диагностики неисправностей).

Импактор «Флора-100» прошел государственные испытания и рекомендован Комитетом по новой технике (протокол № 7 от 26. 12. 95) к применению в медицинской практике.

4.2. Методику проведения контроля с использованием импактора «Флора-100» рекомендуется согласовывать с разработчиком импактора для уточнения времени аспирации в зависимости от особенностей контролируемой микрофлоры.

4.3. Прибор для бактериологического анализа воздуха, модель 818 ТУ 64–1–791 –77

4.4. Секундомер ГОСТ 9586–75

4.5. Чашки бактериологические, плоскодонные, стеклянные диаметром 100 мм ГОСТ 10937–75